摘要
为探究两种南极鱼对不同元素的富集差异,采用电感耦合等离子体质谱法,对两种南极鱼的脑、心脏、十二指肠3种组织中的铁(Fe)、铬(Cr)、锰(Mn)、铜(Cu)、锌(Zn)、砷(As)、硒(Se)、镉(Cd)和汞(Hg)等9种微量元素含量进行测定与比较分析。结果表明,独角雪冰鱼(Chionodraco hamatus)脑中的Fe、Cu、As、Hg、Cd等元素含量显著低于伯氏肩孔南极鱼(Trematomus bernacchii)(P<0.05);心脏组织中的Fe、Cu、Cd、Hg等4种元素含量同样显著低于伯氏肩孔南极鱼(P<0.05);而十二指肠中的Hg、Mn、As、Se的含量则显著高于伯氏肩孔南极鱼(P<0.05)。Fe作为血红蛋白的重要组成元素,独角雪冰鱼脑与心脏中Fe元素含量显著低于伯氏肩孔南极鱼,推测与独角雪冰鱼缺乏血红蛋白有关。独角雪冰鱼十二指肠中重金属元素含量显著较高,推测与其底栖生活习性相关,更容易积累重金属元素。与其他海域的鱼类相比,2种南极鱼体内的Cr、As、Cd、Hg、Mn、Cu含量比较高,反映了部分南极海域可能已经受到一定程度的重金属污染。
在漫长的演化中,南极海域鱼类逐渐进化出适应极端低温环境的独特生理机制,南极鱼类因此也成为了研究鱼类抗低温机制的重要生
微量元素是动物生长发育、基本生理活动的必要营养成分,几乎参与了机体的全部生理生化过程,在维持生物体正常生理活动中起重要调节作用,包括参与骨骼形成、电子传递、酸碱平衡和渗透压调节。另外,微量元素还是激素和酶的重要成分和激活剂。微量元素缺乏时,会使生物学产生生化、结构和组织上的病
重金属元素是指密度在4.5 g/c
独角雪冰鱼与伯氏肩孔南极鱼同属鲈形目,且生活海域重叠度较高,其独特的生理结构特征,使其成为了研究低温环境中生物功能基因进化的代表性生物。对两者各组织微量元素差异的研究有助于了解因血红蛋白丢失所带来的影响以及两种鱼类的生理差异。
目前,已有学者对南极鱼骨骼、肝脏、肾、胃、肠的微量元素含量进行了测定,发现南极鱼肝脏中Fe元素含量相对其他海域鱼类较低,但其他有害重金属(如:As、Cd、Hg)的含量较高,这可能与南极海域本身的重金属含量有
因此,本研究拟对独角雪冰鱼和伯氏肩孔南极鱼的脑、心脏、十二指肠3种组织中的铁(Fe)、铬(Cr)、锰(Mn)、铜(Cu)、锌(Zn)、砷(As)、硒(Se)、镉(Cd)和汞(Hg)等9 种元素进行测定,以探究缺乏血红蛋白的独角雪冰鱼与具有血红蛋白和红细胞的伯氏肩孔南极鱼两者对不同微量元素吸收富集规律的差异,并为探究南极海域重金属污染水平提供一定依据。
实验用仪器主要有诱导耦合等离子体质谱仪(ICP-MS,Agilent 7500CE)、电子天平(BS-4083,北京科恒实业发展有限公司)、大型微波消解仪(Milestone ETHOS UP)、鼓风干燥箱(DHG-9030A,上海一恒科学仪器有限公司)、移液器(Eppendorf)、超纯水系统(MilliQ,P2PA7491)等。实验所用试剂硝酸、双氧水、高氯酸等均购于生工生物工程(上海)股份有限公司。
实验所用的南极鱼样品在运输过程及实验之前一直储存在-80 ℃超低温冰箱中。样品解冻后,利用酸洗消毒过的解剖工具分离独角雪冰鱼和伯氏肩孔南极鱼样品的脑,心脏与十二指肠组织。称量适量的样品置于微波消解管中,缓慢加入4.5 mL 70% HNO3,再加入0.5 mL的HClO4,摇动消解管使两者混匀,使样品与消化液充分接触。随后,将消解管放入微波消解仪(CEM Mars)中,在85 ℃下消解4 h,同时进行空白对照组的实验。待样品冷却至室温后,打开消解仪。将消解后的样品置于电热板上140 ℃赶酸,待白烟冒尽,剩余体积1 mL左右转移到15 mL容量瓶中,用超纯水定容,混匀待测。待测的样品置于4 ℃保存(在Se含量测定中,使用2 mL 70% HNO3和2 mL 35% H2O2来进行消化)。为避免所用实验用具被微量元素污染,在使用之前用洗涤剂清洗玻璃器皿和塑料器皿,并将其在1∶3硝酸溶液中浸泡至少24 h,之后用超纯水冲洗并烘干。用电感耦合等离子体质谱仪(ICP-MS,Agilent 7500CE)对空白溶液和标准溶液不同组织样品中的Fe、Cr、Mn、Cu、Zn、As、Se、Cd和Hg等9种元素的含量进行测定。
实验测定了两种南极鱼的脑、心脏与十二指肠中Fe、Cr、Mn、Cu、Zn、As、Se、Cd、Hg等9种微量元素含量,并对其差异进行显著性分析。两种南极鱼的脑组织微量元素的平均含量与标准差如

图1 独角雪冰鱼和伯氏肩孔南极鱼3种组织中不同元素含量比较
Fig.1 Comparison of contents of different elements in three kinds of tissues of C. hamatus and T. bernacchii
柱状图上“*”表示差异性显著,“**”表示差异性极显著。
“*”means P<0.05,the difference is significant;“**”means P<0.01,the difference is very significant.
两种南极鱼心脏中的Fe元素含量呈现极显著性差异(P<0.01),两种南极鱼心脏中的Cu、Cd、Hg等3种元素含量存在显著性差异(P<0.05)。两种南极鱼心脏组织中,独角雪冰鱼的9种微量元素含量顺序为Hg>Fe>As>Cd>Zn>Mn>Cr>Cu>Se;伯氏肩孔南极鱼的微量元素含量顺序为Fe>Hg>As>Cd>Zn>Mn>Cr>Cu>Se。跟脑组织类似,伯氏肩孔南极鱼的心脏组织中各微量元素的含量均高于独角雪冰鱼(
从
图

图2 不同微量元素在两种南极鱼的3种组织中的分布规律
Fig.2 Distribution patterns of different trace elements in three tissues of two species of Antarctic fish
图
脑是鱼类最复杂的器官,控制着鱼类各项生理活动。与哺乳动物相比,鱼脑的结构相对简单,可分为端脑、间脑、中脑、小脑和延脑5个部
Zn元素在神经系统发育中具有重要作用。在分子水平上,Zn控制细胞周期、细胞凋亡,蛋白质折叠等过程。Zn也是许多酶系统的组成部分,包括碳酸酐酶(Carbonic anhydrase)、超氧化物歧化酶(Superoxide dismutase)、核糖核酸酶(Ribonuclease)和DNA聚合酶(DNA polymerase
心脏是最重要的血液循环器官。具有血红细胞和血红蛋白的伯氏肩孔南极鱼心脏中Fe元素含量显著高于其他两种组织(
在鱼的心脏组织中,C
独角雪冰鱼心脏中的微量元素含量明显低于其他2个器官(图
十二指肠为小肠的第一段,介于胃与空肠之间,是小肠中长度最短、管径最大、位置最深且最为固定的部分。它既接受胃液,又接受胰液和胆汁,在消化过程中起到非常重要的作
肠道是鱼类吸收多种微量元素(如Fe、Cu、Se、Mn)的主要器
由于南极海域的特殊环境,两种南极鱼脑、心脏与肠道中的微量元素水平与其他海域的鱼类有着较为明显的差异。从
种类Species | 微量元素含量(干重)Element content (dry weight)/(mg/kg) | ||||||||
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
Fe | Cr | Mn | Cu | Zn | As | Se | Cd | Hg | |
脑Brain | |||||||||
独角雪冰鱼 Chionodraco hamatus | 28.68±11.70 | 23.07±3.43 | 27.87±8.83 | 14.40±4.80 | 49.92±11.53 | 49.43±22.97 | 13.99±4.07 | 55.26±6.19 | 55.84±15.87 |
伯氏肩孔南极鱼 Trematomus bernacchii | 67.79±20.23 | 38.86±9.42 | 48.61±18.76 | 30.23±8.18 | 54.91±38.08 | 112.83±20.68 | 17.72±8.60 | 105.47±8.29 | 112.60±18.83 |
Silurus asotus | 198.64±128.42 | 32.87 | 1.50 | 68.36±50.60 | 198.64 | 1.29 | 1.80 | 0.58±0.89 | 0.72±0.15 |
岩原 Procypris rabaudi | 169.19±60.50 | - | 3.46±1.01 | 2.19±0.21 | 20.59± 5.9 | - | - | - | - |
黄颡 Pelteobagrus fulvidraco | 145.35±45.22 | - | 11.24±1.5 | 22.48±2.01 | 43.37±17.4 | - | - | - | - |
| - | 0.31 | - | 3.00 | - | - | - | 0.045 | - |
青 Mylopharyngodon piceus | - | 0.34 | - | 1.59 | - | - | - | 0.038 | - |
心脏Heart | |||||||||
独角雪冰鱼 Chionodraco hamatus | 47.69±11.23 | 18.98±5.96 | 31.02±3.39 | 14.65±3.18 | 32.09±14.33 | 47.15±18.03 | 11.63±2.55 | 40.79±13.62 | 51.97±13.57 |
伯氏肩孔南极鱼 Trematomus bernacchii | 136.06±13.88 | 25.76±8.61 | 38.76±9.03 | 24.52±3.79 | 51.82±27.07 | 71.84±22.79 | 15.39±4.43 | 68.21±9.67 | 81.70±11.51 |
Silurus asotus | 470.47 | 0.71±0.80 | 2.16±0.37 | 22.15±2.77 | 143.73±42.51 | - | 3.15 | 0.20±0.24 | 1.05 |
黄颡 Pelteobagrus fulvidraco | 746.72±244.96 | - | 36.1±21.34 | 43.0±17.41 | 120.2±35.49 | - | - | - | - |
molitrix | - | 3.24 | - | 17.9 | - | 0.64 | - | 0.88 | 0.10 |
Cyprinus carpio | - | 4.77 | - | 19.10 | - | 1.00 | - | 0.06 | 0.07 |
| - | - | - | 2.72±0.66 | 8.04±1.06 | - | - | 0.13±0.05 | - |
草 Ctenopharyngodon idella | - | - | - | 3.06±0.37 | 6.71±0.34 | - | - | 0.42±0.04 | - |
青 Mylopharyngodon piceus | - | - | - | 3.32±0.40 | 7.72±1.42 | - | - | 0.23±0.07 | - |
南极海域相较于其他海域,环境相对独立,离各类污染源距离较远。然而,由于人类活动的全球化及大气循环、洋流的存在,仍然有重金属污染物进入了南极海域,如南极海域中 Hg 的主要来源是大气污染
当前对于南极鱼类体内的微量元素的研究表明,南极鱼体内与其他海域鱼类的微量元素水平既在南极鱼的生理活动调控及抗低温中起到重要作用,也受到南极海域水体环境的金属元素浓度的影响。同时,作为极少数缺乏血红蛋白的南极鱼类,独角雪冰鱼与伯氏肩孔南极鱼组织器官的微量元素含量差异也有着显著差异。对两种南极鱼不同组织微量元素含量差异的研究有助于我们分析南极环境对南极鱼生理演化的影响,并一定程度反映该地区重金属污染的情况。
利益冲突
作者声明本文无利益冲突。
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